We report the draft genome sequence of Geobacillus sp. strain G4, isolated from a hot spring in the Calientes geothermal field, Tacna, Peru. The genome was assembled into 164 contigs, totaling 3,362,411 bp, with an N50 value of 236,119 bp and a guanine-cytosine (GC) content of 52.59%.

The genome of Geobacillus sp. G4, a thermophilic bacterium isolated from a geothermal field in Peru, was sequenced and analyzed to evaluate its taxonomic and biotechnological potential. This strain exhibits optimal growth at temperatures between 50 and 70 °C and at a pH range of 6.0–7.5. Phenotypic assays demonstrated extracellular enzymatic activities, including amylases, cellulases, pectinases, and xylanases, highlighting its potential for efficient polysaccharide degradation. The assembled genome comprises approximately 3.4 Mb with a G+C content of 52.59%, containing 3,490 genes, including coding sequences, rRNAs, and tRNAs. Functional annotation revealed genes associated with key metabolic pathways such as glycogen and trehalose biosynthesis, indicating adaptation to carbohydrate-rich environments. Phylogenetic analyses based on ANI and dDDH values identified Geobacillus thermoleovorans KCTC3570 as its closest relative, suggesting a strong evolutionary relationship. Additionally, the genome harbors gene clusters for secondary metabolites such as betalactone and fengycin, suggesting potential industrial and pharmaceutical applications, including bioremediation. The identification of antibiotic resistance genes, specifically those conferring glycopeptide resistance, underscores their relevance for antimicrobial resistance studies. The presence of enzymes like amylases and pullulanase further emphasizes its biotechnological potential, particularly in starch hydrolysis and biofuel production. Overall, this research highlights the significant potential of Geobacillus species as valuable sources of thermostable enzymes and biosynthetic pathways for industrial applications.

La arsenopirita es una fuente mineral para la recuperación de oro puro, sobre ella se emplea la biooxidación, tecnología muy poco estudiada y aplicada en nuestro país a pesar que es de bajo costo, eficiente y amigable con el ambiente. Este trabajo tuvo como objetivo evaluar el grado de biooxidación en dos diferentes concentraciones de arsenopirita por cultivos microbianos de colección que previamente fueron adaptados al 1 % de arsenopirita en el medio de cultivo 0K. La arsenopirita se tamizó en un tamice Tyler menor de 200 y se agregó en concentraciones de 8 y 12 % en los biorreactores que contuvieron 700 ml de medio fermentativo (630 ml de medio de cultivo esterilizado con 70 ml de inóculo microbiano). El inóculo estuvo formado por suspensiones de un cultivo microbiano puro y de uno mixto (dos cultivos puros). La incubación se desarrolló a temperatura de ambiente durante 288 horas con aireación. Se evaluó el crecimiento microbiano, pH, hierro total, hierro II, hierro III y la formación de biofilm sobre la superficie de la arsenopirita. Se determinó que el cultivo microbiano mixto actuando sobre la arsenopirita al 8 % produjo el mayor grado de biooxidación correspondiente a una producción de 8197.7 mg L-1 de hierro III.

El estudio sobre la biolixiviación de metales a partir de minerales es una necesidad para mejorar el proceso de recuperar metales preciados y obtener mayores beneficios. El objetivo fue determinar en cuatro reactivaciones sucesivas, la velocidad específica de crecimiento y estabilidad de consorcios microbianos obtenidos de la planta de lixiviación de la empresa minera Southern Cooper Corporation (SCC) en Toquepala, Tacna - Perú. Los consorcios M-1, M-2, M-5, M-6 y BF-7 fueron obtenidos de la calcopirita de las pilas de lixiviación; y los PLS-3, PLS-4 e ILS-8 de las soluciones líquidas lixiviadas. El medio líquido de cultivo utilizado fue el 9K modificado. Los consorcios tuvieron cuatro reactivaciones sucesivas en el medio 9K, por triplicado, a temperatura ambiente durante 15 días y con aireación de 1vvm. Los recuentos microbianos, obtenidos cada ocho horas en la cámara de conteo Petroff-Hausser, fueron convertidos a la escala logarítmica decimal para obtener la cinética de crecimiento, utilizando el modelo Malthusiano, que determinó la constante de velocidad K en la fase logarítmica, y el modelo Gompertz para la curva de crecimiento microbiano. Los consorcios de muestras sólidas y de biofilm tuvieron una adaptación más rápida, comparados con los provenientes de las muestras líquidas de PLS e ILS, que mostraron una concentración microbiana inactiva en sus inicios. Todos los consorcios, después de la primera reactivación, evidenciaron velocidades de crecimiento más altas. Las muestras M-6 y BF-7 de biofilm tuvieron los microrganismos más activos y la muestra BF-7 fue la más estable durante las cuatro reactivaciones, por lo cual es la muestra indicada para continuar con estudios de aplicación, como inóculo y aislamiento de microorganismos, para la optimización de los procesos de biolixiviación.

La investigación tuvo como objetivo determinar el diámetro del halo de hidrólisis amilolítico, la roducción de proteínas amilásicas y la actividad enzimática de las amilasas producidas por Geobacillus thermoparaffinivorans (CB-13) a diferentes tiempos de producción. La cepa amilolítica de Geobacillus thermoparaffinivorans (CB-13), aislada de los géiseres de Candarave, Tacna se reactivó e incubó en caldo Luria Bertani (LB) a 60 °C durante 24 horas y se sembró por puntura en agar almidón 1 % para determinar los halos de hidrólisis amilolíticos. Posteriormente, se inoculó 5 % (v/v) de medio caldo LB con crecimiento bacteriano en 50 ml de medio de caldo almidón 1 % por triplicado, después fue incubado en estufa con agitador orbital a 150 rpm a 60 °C durante 60 horas. Asimismo, se extrajeron de cada incubación, con periodos de tiempo de 12 horas, alícuotas de 1.5 ml para ser centrifugadas y obtener el sobrenadante que se utilizó para determinar la concentración de proteínas (mg ml-1) como indicativo de la producción de amilasas, y la concentración de azúcares reductores como indicativo de la actividad enzimática (U ml-1). Se obtuvo un diámetro de halo de hidrólisis de almidón formado alrededor de la colonia de la cepa amilolítica de 10.6 mm, una producción de amilasas máxima de 0.197 mg ml-1 a las 48 horas de producción y una actividad enzimática máxima a las 36 horas de producción de 0.505 U ml-1.