M. SARSHAYEVA, A. TASHKENBAYEVA, A. BILIBAYEVA, ZH. IRSALIYEVA, and A.M. USTEMIROVA Citation: Sarshayeva M, Tashkenbayeva A, Bilibayeva A, Irsaliyeva Zh, Ustemirova AM (2024). Technological aspects of in vitro propagation of organic strawberries. SABRAO J. Breed. Genet. 56(1): 246-257. http://doi.org/10.54910/sabrao2024.56.1.22. Summary The article showcased experimental data on key stages of the

Мақалада негізгі және репродуктивті аналық бақтарды құру, әлемдік коллекциядан ең жақсы сорттарды өндіріске жедел енгізу үшін апикальды меристемалар культурасынан құлпынайдың төрт сортынан сауықтырылған, отырғызу материалын өндіру бойынша эксперименттік деректер келтірілген. Сауықтыру және көбею үшін құлпынайдың таңдалған ең жақсы сорттары ұлпа культурасына енгізіліп, экспланттарды зарарсыздандыру, ұлпа культурасына енгізу, апекстердің бастапқы регенерациясы, пролиферация және генотипті сақтай отырып, ризогенез кезеңдерінде әр сорт бойынша клондық микрокөбейтудің технологиялық схемасы жетілдірілді. Өсімдіктердің in vitro-дан ex vitro-ға ауысуы кезінде ұлпа культурасына жеткілікті материал көбейіп, бейімделу кезеңі жетілдірілді. Жылыжайда микроклондалған өсімдіктер негізгі санаттағы стандартты өлшемдерге дейін өсірілді және негізгі розеткаларға көбейтілді. In vitro бақша құлпынайының перспективалы сорттарын клондық микрокөбейту технологиясының элементтері оңтайландырылды. 5 қайта отырғызудың көбею коэффициенті орта есеппен Сабрина сортында 50-ден Черный принц сортында 150-ге дейін болды. Тамыр жүйесінің қалыптасу жылдамдығы сорттық ерекшеліктерге байланысты болды. Тамыр түзілуінің жоғары жылдамдығы Черный принц сортында ерекшеленді - тамырлану қоректік ортасына отырғызғаннан кейін 25-30 күн, содан кейін Сабрина мен Мальвина сорттарында – 35 - 40 күн және Сан Андреас сортында – 45-55 күн.

В мировой практике клональное микроразмножение земляники садовой применяется для быстрого и эффективного размножения отдельных форм и сортов из небольшого количества исходного материала, отбора in vitro на ранних стадиях развития. На стадии введения в культуру тканей растения земляники стерилизовались препаратами активный хлор в составе гипохлорита натрия в различных концентрациях и экспозиции. Для развития регенерации и приобретение экологически чистой рассады земляники в питательную среду вводили в обмен регуляторов роста химической природы (цитокинины и ауксины) аминокислоту пролин в концентрации 10мг/л, аденозинтрифосфат (АТФ) -10мг\л, и витамин С-аскорбиновая кислота – 10мг\л. Установлено, что внесение аскорбиновой кислоты в концентрации 10 мг/л в состав питательной среды полностью исключает фенольное окисление апексов на этапе введения в культуру тканей и регенерации. Внесение аминокислоты пролин и АТФ в состав питательной среды увеличило регенерацию на 10-15% по трем сортам земляники. На этапе укоренения большое количество корней образовывалось на сорте Мальвина. У сортов Сабрина и Ред Гонтлит эти данные были несколько ниже. По высоте растений выделялся сорт Мальвина 10 шт. Наименьшей высотой растений характеризовались сорта Сабрина и Ред Гонтлит 5 и 7 шт. соответственно. Укорененные микрорастения земляники пересаживались в условия ex vitro для их адаптации.

Современное садоводство требует саженцы с низким ростом и компактностью крон, безвирусные и высококачественные, что обеспечивает интенсивность и высокую продуктивность сада. В системе производства безвирусного посадочного материала методу клонального микроразмножения отводится значительное место. Использование биотехнологических методов в питомниководстве позволяет повысить эффективность оздоровления растений до 100%, в 5-10 раз и более увеличить коэффициент размножения и на 2-3 года ускорить внедрение новых оздоровленных сортов и форм в производство. В представленных исследованиях определён состав вирусных болезней в маточных насаждениях подвоев яблони и оптимизированы этапы клонального микроразмножения с модификацией состава питательной среды на этапах регенерации апексов после введения в культуру тканей, пролиферации и ризогенеза, а также их адаптации к условиям ex vitro. Проведена диагностика и идентификация сокопереносимых вирусов ACLSV и ASGV методом биологического тестирования. Для исключения вирусных инфекции из растений в условиях защищенного грунта проведена термотерапия при температуре ≈38°С и влажностью ≈60-70% продолжительностью 30 дней. Из активно отросших верхушечных побегов в условия in vitro введена меристематическая ткань. В результате работы в контейнерной культуре при черенковании безвирусных пребазисных маточных растений получено 126 базовых растений подвоя Арм 18 и 31 базовых растений подвоя Жетысу 5.