O solo é um dos principais compartimentos de carbono no ecossistema terrestre, capaz de armazenar quantidades expressivas desse elemento e, portanto, a compreensão dos fatores que contribuem para as perdas de CO2 em solos agrícolas é fundamental para determinar estratégias de redução das emissões desse gás e ajudar a mitigar o efeito estufa. O objetivo deste estudo foi investigar o efeito do preparo do solo e da deposição de resíduos da cultura da cana-de-açúcar na emissão de CO2, temperatura e umidade do solo, durante a reforma do canavial, ao longo de um período de 15 dias. Os manejos avaliados foram: sem preparo do solo e mantendo os resíduos da colheita sobre a superfície do solo (SPCR); sem preparo do solo e sem resíduo (SPSR) e com preparo do solo e sem resíduo (CPSR). A menor média de emissão de CO2 do solo (FCO2) foi observada no manejo SPCR (2,16 µmol m-2 s-1), quando comparado aos manejos SPSR (2,90 µmol m-2 s-1) e CPSR (3,22 µmol m-2 s-1), indicando que as maiores umidades e menores variações da temperatura do solo, observadas em SPCR, foram os fatores responsáveis por tal diminuição. Durante o período de estudo, a menor média diária da FCO2 foi registrada em SPCR (1,28 µmol m-2 s-1) e a maior em CPSR (6,08 µmol m-2 s-1), após a ocorrência de chuvas. A menor perda de C-CO2 do solo foi observada no manejo SPCR (367 kg ha-1 de C-CO2), diferindo significativamente (p<0,05) dos manejos: SPSR (502 kg ha-1 de C-CO2) e CPSR (535 kg ha-1 de C-CO2). A umidade do solo foi a variável que apresentou valores mais diferenciados entre os manejos, sendo positivamente correlacionada (r = 0,55; p<0,05) com as variações temporais da emissão de CO2 nos manejos SPCR e CPSR. Em adição, a temperatura do solo diferiu (p<0,05) somente no manejo SPCR (24 ºC), quando comparada aos manejos SPSR (26 ºC) e CPSR (26,5 ºC), sugerindo que, para as condições deste estudo, o resíduo da cana-de-açúcar retido sobre a superfície propiciou uma temperatura do solo, em média, 2 ºC mais amena.

The spatial structure of soil CO₂emission (FCO₂) and soil attributes are affected by different factors in a highly complex way. In this context, this study aimed to characterize the spatial variability patterns of FCO₂and soil physical, chemical, and microbiological attributes in a sugarcane field area after reform activities. The study was conducted in an Oxisol with the measurement of FCO₂, soil temperature (Ts), and soil moisture (Ms) in a regular 90 × 90-m grid with 100 sampling points. Soil samples were collected at each sampling point at a depth of 0–0.20 m to determine soil physical (density, macroporosity, and microporosity), particle size (sand, silt, and clay), and chemical attributes (soil organic matter, pH, P, K, Ca, Mg, Al, H + Al, cation exchange capacity, and base saturation). Geostatistical analyses were performed to assess the spatial variability and map soil attributes. Two regions (R1 and R2) with contrasting emission values were identified after mapping FCO₂. The abundance of bacterial 16S rRNA,pmoA, andnifH genes, determined by real-time quantitative PCR (qPCR), enzymatic activity (dehydrogenase, urease, cellulase, and amylase), and microbial biomass carbon were determined in R1 and R2. The mean values of FCO₂(2.91 µmol m⁻² s⁻¹), Ts (22.6 °C), and Ms (16.9%) over the 28-day period were similar to those observed in studies also conducted under Oxisols in sugarcane areas and conventional soil tillage. The spatial pattern of FCO₂was similar to that of macropores, air-filled pore space, silt content, soil organic matter, and soil carbon decay constant. No significant difference was observed between R1 and R2 for the copy number of bacterial 16S rRNA andnifH genes, but the results of qPCR for thepmoA gene presented differences (p < 0.01) between regions. The region R1, with the highest FCO₂(2.9 to 4.2 µmol m⁻² s⁻¹), showed higher enzymatic activity of dehydrogenase (33.02 µg TPF g⁻¹dry soil 24 h⁻¹), urease (41.15 µg NH₄–N g⁻¹dry soil 3 h⁻¹), amylase (73.84 µg glucose g⁻¹dry soil 24 h⁻¹), and microbial biomass carbon (41.35 µg C g⁻¹soil) than R2, which had the lowest emission (1.9 to 2.7 µmol m⁻² s⁻¹). In addition, the soil C/N ratio was higher in R2 (15.43) than in R1 (12.18). The spatial pattern of FCO₂in R1 and R2 may not be directly related to the total amount of the microbial community (bacterial 16S rRNA) in the soil but to the specific function that these microorganisms play regarding soil carbon degradation (pmoA).