Daniil Salimov

Dr. Daniil Salimov

orcid

Research Focus & Metrics

Academic Career Length

4Years (2023-Present)

(Calculated once Scilit publication data is synced: current year − year of first publication + 1)

Representative Publications

View All Publications
Verified
Journal Article
Open access
PDF file
IBIrina Bogolyubova
Irina Bogolyubova
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov
Dmitry S. BogolyubovDmitry S. Bogolyubov
Dmitry S. Bogolyubov
In the oocyte nucleus, called the germinal vesicle (GV) at the prolonged diplotene stage of the meiotic prophase, chromatin undergoes a global rearrangement, which is often accompanied by the cessation of its transcriptional activity. In many mammals, including mice and humans, chromatin condenses around a special nuclear organelle called the atypical nucleolus or formerly nucleolus-like body. Chromatin configuration is an important indicator of the quality of GV oocytes and largely predicts their ability to resume meiosis and successful embryonic development. In mice, GV oocytes are traditionally divided into the NSN (non-surrounded nucleolus) and SN (surrounded nucleolus) based on the specific chromatin configuration. The NSN–SN transition is a key event in mouse oogenesis and the main prerequisite for the normal development of the embryo. As for humans, there is no single nomenclature for the chromatin configuration at the GV stage. This often leads to discrepancies and misunderstandings, the overcoming of which should expand the scope of the application of mouse oocytes as a model for developing new methods for assessing and improving the quality of human oocytes. As a first approximation and with a certain proviso, the mouse NSN/SN classification can be used for the primary characterization of human GV oocytes. The task of this review is to analyze and discuss the existing classifications of chromatin configuration in mouse and human GV oocytes with an emphasis on transcriptional activity extinction at the end of oocyte growth.

31 July 2023 in Cells
Verified
Journal Article
Open access
PDF file
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov
TLTatiana Lisovskaya
Tatiana Lisovskaya
JOJunko Otsuki
Junko Otsuki
AGAlexandre Gzgzyan
Alexandre Gzgzyan
IBIrina Bogolyubova
Irina Bogolyubova
Dmitry S. BogolyubovDmitry S. Bogolyubov
Dmitry S. Bogolyubov
The search for simple morphological predictors of oocyte quality is an important task for assisted reproduction technologies (ARTs). One such predictor may be the morphology of the oocyte nucleus, called the germinal vesicle (GV), including the level of chromatin aggregation around the atypical nucleolus (ANu)—a peculiar nuclear organelle, formerly referred to as the nucleolus-like body. A prospective cohort study allowed distinguishing three classes of GV oocytes among 135 oocytes retrieved from 64 patients: with a non-surrounded ANu and rare chromatin blocks in the nucleoplasm (Class A), with a complete peri-ANu heterochromatic rim assembling all chromatin (Class C), and intermediate variants (Class B). Comparison of the chromatin state and the ability of oocytes to complete meiosis allowed us to conclude that Class B and C oocytes are more capable of resuming meiosis in vitro and completing the first meiotic division, while Class A oocytes can resume maturation but often stop their development either at metaphase I (MI arrest) or before the onset of GV breakdown (GVBD arrest). In addition, oocytes with a low chromatin condensation demonstrated a high level of aneuploidy during the resumption of meiosis. Considering that the degree of chromatin condensation/compaction can be determined in vivo under a light microscope, this characteristic of the GV can be considered a promising criterion for selecting the best-quality GV oocytes in IVM rescue programs.

3 April 2025 in Cell and Tissue Biology
Verified
Journal Article
Closed access
PDF file
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov
IBI. O. Bogolyubova
I. O. Bogolyubova
Dmitry S. BogolyubovDmitry S. Bogolyubov
Dmitry S. Bogolyubov
Objective: The purpose of this study was to analyze the patterns of cytoplasmic granulation of GV oocytes that differ in their ability to resume and complete meiotic maturation in vitro. Methods: Although in vitro fertilization (IVF) programs usually use mature (metaphase II, MII) oocytes, it is also possible to use diplotene oocytes at the germinal vesicle (GV) stage after their in vitro maturation (IVM). Results and Discussion: Morphological characteristics of native GV oocytes are promising predictors of their capacity for spontaneous maturation in stimulated cycles. Conclusions: It has been shown that the central granulation pattern negatively correlates with the ability of GV oocytes to spontaneously mature in vitro.

29 March 2024 in Akusherstvo i ginekologiia
Verified
Journal Article
Closed access
MMMayasina E.N. Mayasina
Mayasina E.N. Mayasina
BBBuev Yu.E. Buev
Buev Yu.E. Buev
AAAskerov R.A. Askerov
Askerov R.A. Askerov
YYYamalyeva N.SH. Yamalyeva
Yamalyeva N.SH. Yamalyeva
KKKichigina E.A. Kichigina
Kichigina E.A. Kichigina
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov

3 November 2023 in Russian Journal of Human Reproduction
Verified
Journal Article
Closed access
EME.N. Mayasina
E.N. Mayasina
YBYu.E. Buev
Yu.E. Buev
RAR.A. Askerov
R.A. Askerov
NYN.SH. Yamalyeva
N.SH. Yamalyeva
EKE.A. Kichigina
E.A. Kichigina
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov
Применение препаратов прогестерона при переносе эмбриона в программах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) является необходимым этапом успешного лечения бесплодия. Согласно результатам систематического обзора, опубликованного в 2015 г., применение препаратов прогестерона в программах ЭКО статистически значимо повышает частоту наступления беременности по сравнению с плацебо. Большинство (74,1% респондентов) специалистов в мире предпочитают вагинальный путь введения прогестерона. ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ Выполнить анализ эффективности программ ЭКО с переносом эмбриона у пациенток с поддержкой лютеиновой фазы цикла биоадгезивным вагинальным гелем прогестерона (Миражэль) и микронизированным прогестероном в капсулах (Утрожестан) по показателю частоты клинической беременности в расчете на перенос эмбриона. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ Проведен ретроспективный сравнительный анализ эффективности программ ЭКО по показателю частоты клинической беременности в расчете на перенос эмбриона в двух группах пациенток с применением разных форм прогестерона для гормональной поддержки лютеиновой фазы. В исследование включено 309 пациенток, методом слепой выборки разделенных на две группы. Пациенткам 1-й группы (n=154) в качестве гормональной поддержки лютеиновой фазы со следующего дня после пункции фолликулов назначен вагинальный гель прогестерона 90 мг/сут (Миражэль, АО «Вертекс», Россия»), пациентки 2-й группы (n=155) получали со следующего дня после пункции фолликулов микронизированный прогестерон 200 мг 3 раза в сутки вагинально (Утрожестан, Besins Healthcare, Бельгия). Пациентки были сопоставимы по клиническим характеристикам. Всем пациенткам выполнен протокол с антагонистами гонадотропин-рилизинг-гормона, стимуляция рекомбинантным фолликулостимулирующим гормоном, в качестве триггера применялся рекомбинантный хорионический гонадотропин человека. Культивирование эмбрионов проводилось в инкубаторе для ЭКО EmbryoScope (Vitrolife A/S, Дания), на 5-е сутки после пункции проведен перенос 1 эмбриона стадии 3—4 по классификации Гартнера и оценкой по шкале KID SCORE не менее 7 баллов. РЕЗУЛЬТАТЫ Частота клинической беременности в расчете на перенос эмбриона в 1-й группе составила 59,1%, во 2-й группе — 55,2% и не имела статистически значимых различий между группами (p=0,49). ЗАКЛЮЧЕНИЕ Показана высокая эффективность применения двух препаратов прогестерона вагинальной формы введения (биоадгезивный гель «Миражэль и капсулы «Утрожестан») в программах экстракорпорального оплодотворения по показателю частоты наступления беременности в расчете на перенос эмбриона. При этом комплаентность к препарату «Миражэль» была выше в связи с более удобной формой применения и необходимостью однократного введения препарата в сутки.

31 July 2026 in Akusherstvo i ginekologiia
Verified
Journal Article
Closed access
PPPortnov I.G. Portnov
Portnov I.G. Portnov
LLLisovskaya T.V. Lisovskaya
Lisovskaya T.V. Lisovskaya
RRRezaikin A.V. Rezaikin
Rezaikin A.V. Rezaikin
MMMayasina E.N. Mayasina
Mayasina E.N. Mayasina
DSDaniil Salimov
Daniil Salimov
LLLevin V.A. Levin
Levin V.A. Levin